高考生物實驗匯總：包括實驗原理和考點知識

實驗一：觀察DNA

和RNA在細胞中的分佈

實驗原理：DNA

綠色，RNA 紅色

分佈：真核生物DNA主要分佈在細胞核中，線粒體和葉綠體內也含有少量的DNA;RNA主要分佈在細胞質中。

實驗結果：細胞核呈綠色，細胞質呈紅色。

實驗二：物質鑒定

還原糖+ 斐林試劑

磚紅色沉澱

脂 肪 + 蘇丹III橘黃色

脂 肪 + 蘇丹IV紅色

蛋白質 + 雙縮脲試劑紫色反應

1、還原糖的檢測

(1)材料的選取：還原糖含量高，白色或近於白色，如蘋果，梨，白蘿蔔。

(2)試劑：斐林試劑(甲液：0.1g/mL的NaOH溶液，乙液：0.05g/mL的CuSO4溶液)，現配現用。

(3)步驟：取樣液2mL於試管中→加入剛配的斐林試劑1mL(斐林試劑甲液和乙液等量混合均勻后再加入)→水浴加熱2min左右→觀察顏色變化(白色→淺藍色→磚紅色)（馬上點標題下「高中生物」關注可獲得更多知識乾貨，每天更新喲！）

★模擬尿糖的檢測

1、取樣：正常人的尿液和糖尿病患者的尿液

2、檢測方法：斐林試劑(水浴加熱)或班氏試劑或尿糖試紙

3、結果：(用斐林試劑檢測)試管內發生出現磚紅色沉澱的是糖尿病患者的尿液，未出現磚紅色沉澱的是正常人的尿液。

4、分析：因為糖尿病患者的尿液中含有還原糖，與斐林試劑發生反應產生磚紅色沉澱，而正常人尿液中無還原糖，所以沒有發生反應。

2、脂肪的檢測

(1)材料的選取：含脂肪量越高的組織越好，如花生的子葉。

(2)步驟：

製作切片(切片越薄越好)將最薄的花生切片放在載玻片中央

染色(滴蘇丹Ⅲ染液2～3滴切片上→2～3min后吸去染液→滴體積分數50%的酒精洗去浮色→吸去多餘的酒精)

製作裝片(滴1～2滴清水於材料切片上→蓋上蓋玻片)

鏡檢鑒定(顯微鏡對光→低倍鏡觀察→高倍鏡觀察染成橘黃色的脂肪顆粒)

3、蛋白質的檢測

(1)試劑：雙縮脲試劑(A液：0.1g/mL的NaOH溶液，B液：0.01g/mL的CuSO4溶液)

(2)步驟：試管中加樣液2mL→加雙縮脲試劑A液1mL，搖勻→加雙縮尿試劑B液4滴，搖勻→觀察顏色變化(紫色)

考點提示：

(1)常見還原性糖與非還原性糖有哪些?

葡萄糖、果糖、麥芽糖都是還原性糖;澱粉、蔗糖、纖維素都是非還原性糖。

(2)還原性糖植物組織取材條件?

含糖量較高、顏色為白色或近於白色，如：蘋果、梨、白色甘藍葉、白蘿蔔等。

(3)研磨中為何要加石英砂?不加石英砂對實驗有何影響?

加石英砂是為了使研磨更充分。不加石英砂會使組織樣液中還原性糖減少，使鑒定時溶液顏色變化不明顯。

(4)斐林試劑甲、乙兩液的使用方法?混合的目的?為何要現混現用?

混合后使用;產生氫氧化銅;氫氧化銅不穩定。

(5)還原性糖中加入斐林試劑后，溶液顏色變化的順序為： 淺藍色 棕色 磚紅色

(6)花生種子切片為何要薄?

只有很薄的切片，才能透光，而用於顯微鏡的觀察。

(7)轉動細准焦螺旋時，若花生切片的細胞總有一部分清晰，另一部分模糊，其原因一般是什麼?

切片的厚薄不均勻。

(8)脂肪鑒定中乙醇作用?

洗去浮色。

(9)雙縮脲試劑A、B兩液是否混合後用?先加A液的目的。怎樣通過對比看顏色變化?

不能混合;先加A液的目的是使溶液呈鹼性;先留出一些大豆組織樣液做對比。

實驗三：觀察葉綠體和細胞質流動

1、材料：新鮮蘚類葉、黑藻葉或菠菜葉，口腔上皮細胞臨時裝片

2、原理：葉綠體在顯微鏡下觀察，綠色，球形或橢球形。

用健那綠染液染色后的口腔上皮細胞中線粒體成藍綠色，細胞質接近無色。

知識概要：

取材

製片 低倍觀察 高倍觀察

考點提示：

(1)為什麼可直接取用蘚類的小葉，而不能直接取用菠菜葉?

因為蘚類的小葉很薄，只有一層細胞組成，而菠菜葉由很多層細胞構成。

(2)取用菠菜葉的下表皮時，為何要稍帶些葉肉?

表皮細胞除保衛細胞外，一般不含葉綠體，而葉肉細胞含較多的葉綠體。

(3)怎樣加快黑藻細胞質的流動速度?最適溫度是多少?

進行光照

、提高水溫、切傷部分葉片;25℃左右。

(4)對黑藻什麼部位的細胞觀察，所觀察到的細胞質流動的現象最明顯?

葉脈附近的細胞。

(5)若視野中某細胞中細胞質的流動方向為順時針，則在裝片中該細胞的細胞質的實際流動方向是怎樣的?

仍為順時針。

(6)是否一般細胞的細胞質不流動，只有黑藻等少數植物的細胞質才流動?

否，活細胞的細胞質都是流動的。

(7)若觀察植物根毛細胞細胞質的流動，則對顯微鏡的視野亮度應如何調節?

視野應適當調暗一些，可用反光鏡的平面鏡來採光或縮小光圈。

(8)在強光照射下，葉綠體的向光面有何變化?

葉綠體的受光面積較小有一面面向光源

實驗四、觀察有絲分裂

1、材料：洋蔥根尖(蔥，蒜)

2、步驟：

(一)洋蔥根尖的培養

(二)裝片的製作

製作流程：解離→漂洗→染色→製片

1.解離：

藥液： 質量分數為15%的鹽酸，體積分數為95%的酒精(1： 1混合液)。時間：3~5min .目的： 使組織中的細胞相互分離開來。

2.漂洗：

用清水漂洗約10min. 目的： 洗去藥液，防止解離過度，並有利於染色。

3.染色：

用質量濃度為0.01g / mL或0.02g / mL的龍膽紫溶液(或醋酸洋紅液)染色3~ 5min。目的： 使染色體

著色，利於觀察。

4.製片：

將根尖放在載玻片上，加一滴清水，並用鑷子把根尖弄碎，蓋上蓋玻片，在蓋玻片上再加一片載玻片。 然後用拇指輕輕地按壓載玻片。 目的：

使細胞分散開來，有利於觀察。

(三)觀察

1、先在低倍鏡下找到根尖分生區細胞：細胞呈正方形，排列緊密，有的細胞正在分裂。

2、換高倍鏡下觀察：分裂中期→分裂前、后、末期→分裂間期。(注意各時期細胞內染色體形態和分佈的特點)。其中，處於分裂間期的細胞數目最多。

考點提示：

(1)培養根尖時，為何要經常換水?

增加水中的氧氣，防止根進行無氧呼吸造成根的腐爛。

(2)培養根尖時，應選用老洋蔥還是新洋蔥?為什麼?

應選用舊洋蔥，因為新洋蔥尚在休眠，不易生根。

(3)為何每條根只能用根尖?取根尖的最佳時間是何時?為何?

因為根尖分生區的細胞能進行有絲分裂;上午10時到下午2時;因為此時細胞分裂活躍。

(4)解離和壓片的目的分別是什麼?壓片時為何要再加一塊載玻片?

解離是為了使細胞相互分離開來，壓片是為了使細胞相互分散開來;再加一塊載玻片是為了受力均勻，防止蓋玻片被壓破。

實驗五、比較酶和Fe3+的催化效率

考點提示：

(1)為何要選新鮮的肝臟

?

因為在不新鮮的肝臟中，過氧化氫酶的活性會由於細菌的破壞而降低。

(2)該實驗中所用試管應選較粗的還是較細的?為什麼?

應選用較粗的，因為在較細的試管中容易形成大量的氣泡，而影響衛生香的復燃。

(3)為何要選動物的肝臟組織來做實驗，其他動植物的組織的研磨液能替代嗎?

因為肝臟組織中過氧化氫酶含量較豐富;其它動植物組織也含有少量的過氧化氫酶，所以能夠替代。

(4)相同質量的塊狀肝臟和肝臟研磨液，哪一個催化效果好?為什麼?

研磨液效果好;因為它增加過氧化氫酶與過氧化氫的接觸面積。

(5)滴入肝臟研磨液和氯化鐵溶液時，可否共用下個吸管?為什麼?

不可共用，防止過氧化氫酶與氯化鐵混合，而影響實驗效果。

Tips：

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